【干货】全方位解析gst pull-凯发k8网页登录
gst pull-down实验广泛应用于生物学和医学研究领域,特别是在研究蛋白质相互作用、信号传导途径以及药物靶点筛选等方面。通过该实验,既可以验证两种已知蛋白质之间是否存在直接互作关系(gst pull-down wb),也可以用于寻找可能与目标蛋白存在相互作用关系的未知蛋白(gst pull-down lc-ms),为深入理解生命活动的分子机制提供重要线索。
一、实验原理
gst pull-down实验基本原理是利用dna重组技术将已知蛋白(探针蛋白)与gst(谷胱甘肽巯基转移酶)融合,形成gst融合蛋白。融合蛋白通过gst与谷胱甘肽(gsh)的高亲和力,将gst融合的蛋白质固定在谷胱甘肽包被的琼脂糖珠上,充当一种“诱饵蛋白”。
当含有与诱饵蛋白有相互作用的靶标蛋白(目的蛋白)的溶液过柱时,靶标蛋白会被捕获并与诱饵蛋白结合形成复合物,将复合物洗脱后,通过western blot分析可以证实两种蛋白的相互作用,或者筛选相应的目的蛋白。
图1. gst pull -down实验原理图
二、实验流程
1、前期准备:用预冷的1ml pbs洗涤样品(约2 x 10^7个细胞)提取蛋白,并使用wb检测纯化蛋白。
2、获得磁珠结合诱饵蛋白gst-x
3、诱饵蛋白结合互作蛋白y(亦可带除gst之外的其他标签)或总蛋白
4、与融合蛋白发生相互作用的蛋白被亲和到谷胱甘肽层析柱上
5、洗脱获得相互作用的蛋白
6、pull-down后wb验证上样电泳:各取30ul对照组、实验组、input对照、input实验进行聚丙烯酰胺凝胶电泳。
图2. gst pull -down实验流程图
三、结果解读
图3. gst pull -down实验结果图
上图是以a-gst为诱饵、his-b为猎物进行的pull-down实验(a和b 代表待验证的诱饵和猎物蛋白),包含对照组、实验组以及各自的 input组,pull down后分别用gst和his抗体检测信号;判定实验成功的标准是能够在检测gst信号时,对照泳道检测到 gst标签蛋白,实验泳道检测到a-gst。
input (阳性对照):
对照组:加入b-his(猎物蛋白) gst标签蛋白
实验组:加入b-his(猎物蛋白) a-gst(诱饵蛋白)
目的:用相应的抗体检测发现均能检测到两组中的四个蛋白,证明实验体系没有问题,gst标签不会和his 猎物蛋白有相互作用。
pull down :
对照组:加入b-his(猎物蛋白) gst标签蛋白
实验组:加入b-his(猎物蛋白) a-gst(诱饵蛋白)
对照组中:分别使用his 抗体和gst抗体进行检测,可以看到使用his抗体检测时并未下拉到蛋白,使用gst抗体检测时下拉到gst蛋白,表明b-his(猎物蛋白)和gst标签蛋白没有互作。
实验组中:分别使用his 抗体和gst抗体进行检测,使用his抗体检测时可以下拉到b-his 蛋白,使用gst抗体检测时可以下拉到a-gst蛋白,表明b-his 蛋白和a-gst蛋白存在互作。
四、实验优缺点
优点:
➢ 可验证蛋白质-蛋白质之间的直接互作;
➢ gst标记可把一些难溶蛋白变成可溶蛋白,使实验变得更易操作;
➢ gsh谷胱甘肽偶联球珠亲和力强,洗脱纯度高。
缺点:
◆ 验证互作是在试管中进行的生化反应,不能够完全反映细胞内蛋白真实互作的状态;
◆ 两个非同一定位的蛋白可能因电荷或是强亲和力的原因造成假阳性,需要使用其他方法再次验证,比如co-ip实验等;
◆ 融合表达的gst标签,肽链较长,可能会改变原目的蛋白的原有的折叠结构。
五、gst pull-down实验注意事项
(1)蛋白提取整个过程都在冰上操作,减少高温造成的蛋白降解;超声过程中最好不要有气泡产生,减少蛋白降解,裂解后的总蛋白放在-20℃保存。
(2)制备gst融合蛋白时,应选择合适的载体和诱导条件以获得高质量的可溶性融合蛋白。
(3)在进行蛋白的诱导表达时,可溶性表达温度很重要。当温度过高,载体易形成包涵体,若复性不顺利,蛋白没有活性,会影响后续的实验。故建议进行一个诱导温度的摸索,常见的诱导温度在16℃~25℃。
(4)两种并不互作的dna结合蛋白可能会因为dna的存在而出现相互作用的假阳性结果,因此,在进行gst pull-down实验时,加入核酸酶的步骤十分必要。
(5)虽然大多数情况下不会造成影响,但gst标签仍可能会影响蛋白的正确折叠。如果对融合蛋白进行质量控制,会使实验结果更加可信。例如加入核磁共振、x射线晶体分析等方法验证蛋白结构有无变化;通过结合已知互作蛋白验证蛋白功能有无变化等。
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