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q：我该如何根据自己的研究需求选择酵母单杂还是双杂？
1) 酵母双杂交系统主要用于研究蛋白和蛋白之间的互作；
2) 酵母单杂交系统主要用于研究dna和蛋白之间的互作。
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q：金开瑞提到的酵母单双杂通用文库是什么意思？
金开瑞通过文库构建得到次级文库质粒，将文库质粒转化到y187酵母宿主中，得到两种文库类型，可同时满足酵母单双杂公转筛库或酵母单双杂matting筛库。
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q：相对其他公司而言，金开瑞在酵母杂交业务上具有什么样的优势？
从文库构建来说：
- 文库构建方式灵活：根据样本的类型，提供的样本量等方面考虑，可采用smart，geteway，infusion体外重组和t4体外连接等方式进行文库构建；
- 文库片段大小可控：根据客户想要研究的蛋白类型大小控制片段的大小，以提高筛选到目标蛋白的可能性。如白细胞介素，生长因子类的小分子蛋白；转录因子，信号通路类的分子量稍大一些的蛋白；
- 单双杂文库通用：构建一种类型的文库，可同时用于单双杂筛选；
对于文库筛选来说：
- 筛库方式多样：可采用matting或共转的方式进行文库筛选；
- 互作强弱可控化：提高（降低）筛选压力，用于筛选出强（弱）相互作用的蛋白。
- 阳性结果进一步验证：文库筛选出的阳性结果，可进行点对点验证进一步排除假阳性。
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q：金开瑞酵母杂交主要有哪些业务？
金开瑞酵母杂交的主要凯发娱发k8官网的业务范围如下：
1) 核酵母单/双杂文库构建；
2) 膜酵母双杂交文库构建；
3) 核酵母单/双杂文库筛选；
4) 膜酵母双杂交文库；
5) 核酵母单/双杂点对点验证；
6) 膜酵母双杂交点对点验证。
具体项目介绍可参考酵母单双杂交技术服务。
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q：金开瑞所提到的三框文库和均一化文库具体指什么？与普通文库相比有什么优势吗？
三框：氨基酸对应三个密码子，文库中cdna的片段大小是随机的，读码框也是随机的，例如atg，有可能是从a开始翻译，也有可能是从t或g开始翻译，这种情况下就只会出现一个正确的读码，三框通过人为的引入一个和两个碱基，使每个移码的基因都能正确的被读出来，这样得到的文库即为一个相对较为完整。
均一化：组织样本中会有些基因mrna含量会很高，而有些基因含量会很低。均一化主要是将高峰度的mrna通过人为的处理将其在总样本中的占比降下来，这样低丰度的mrna的占比自然就会升高。如果客户感兴趣的基因恰好属于低丰度mrna，那么在实现mrna的均一性后，文库筛选更有可能的筛出客户的目的功能基因。要注意的是均一化不建议用于研究特殊处理后的样本（如，病毒/细菌侵害，水胁迫等）。
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q：我想在做酵母杂交的同时做一下相关的辅助实验，不知金开瑞有没有平台？
如果您想研究蛋白与蛋白之间的互作，可以与coip /gst-pull downm等实验同时进行；
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q：如果诱饵可以直接激活报告基因，该如何处理？
为保证诱饵蛋白功能的完整性，首先我们会考虑用3’at/aba进行背景抑制，但是由于这两种试剂对酵母生长具有较大的毒性，后续可能会影响文库筛选，因此在3’at超过15mm，aba超过1200ng/ml时我们会考虑将诱饵蛋白进行截断，通过查阅文献和相关数据库，截去转录激活的区域，需要注意的是，截去的这一部分很有可能会影响到互作结果。
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q：酵母单杂诱饵启动子我该选择全长还是核心区域？
1) 全长：优点：更接近于自然条件下的启动环境；缺点：有时候过于长，导致构建具有一定的难度，更可能的产生自激活现象；
2) 预测的核心元件（<20bp）：优点：核心元件用于后续的emsa验证试验，对核心位点进行突变验证启动效果是否减弱，相对全长启动子而言突变的区域较少操作更为方便；缺点：核心元件虽然是启动的核心区域，但是启动子的其他区域也可能是作为辅助元件而存在的，如果缺少这些部分就是非自然条件下的环境，可能产生假阴性；
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q：进行酵母杂交文库筛选时得到的阳性结果，而进行点对点验证却出现阴性结果，是什么原因造成的呢？
可能有以下原因：
1) 酵母杂交本身也是存在假阳性的情况，有可能这两个基因根本不互作，这样在进行单独的点对点验证时自然也不会产生互作；
2) 有些互作为瞬时互作，在文库筛选时可能捕捉导了互作，而在两个基因进行单独验证时由于互作时间的原因，最终导致结果显示为阴性；
3) 有些互作为间接互作，可能需要依靠第三个基因的作用，促进这两个基因的互作。
